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霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐在大腸桿菌發(fā)酵中的精準溫控與高效 時間:2025.04.11
在生物制藥、食品添加劑和生物基材料生產(chǎn)中,大腸桿菌(Escherichia coli)因其快速增殖、遺傳操作便捷和表達效率高等優(yōu)勢,成為工業(yè)化發(fā)酵的核心宿主之一。
 

一、大腸桿菌的特性及發(fā)酵環(huán)境要求

大腸桿菌是一種廣泛應用于生物技術領域的原核微生物,具有生長迅速、遺傳背景清晰、培養(yǎng)條件簡單等優(yōu)點。其代謝類型為兼性厭氧異養(yǎng)型,能夠在有氧和無氧條件下生長。然而,大腸桿菌發(fā)酵過程面臨著諸多挑戰(zhàn),尤其是在大規(guī)模生產(chǎn)中,傳統(tǒng)發(fā)酵罐受限于控溫精度低、參數(shù)調(diào)節(jié)滯后、補料策略單一等缺陷,難以滿足高密度培養(yǎng)和工業(yè)化生產(chǎn)的穩(wěn)定性需求。發(fā)酵環(huán)境的嚴苛要求主要體現(xiàn)在溫度、溶氧、pH值等多個關鍵參數(shù)上。
大腸桿菌在不同培養(yǎng)基中的生長

二、溫度控制在大腸桿菌發(fā)酵中的重要性

溫度是影響大腸桿菌生長和代謝的關鍵因素之一。大腸桿菌的最適生長溫度通常為37℃,但在發(fā)酵過程中,溫度的微小波動可能對其生長速率和產(chǎn)物合成產(chǎn)生顯著影響。以工程大腸桿菌TY03菌株作為L-酪氨酸生產(chǎn)菌為例,通過單因素實驗探究各變量對產(chǎn)量的影響時發(fā)現(xiàn),當發(fā)酵溫度處于35~36℃范圍內(nèi),L-酪氨酸產(chǎn)量隨溫度升高而增加,并在36℃時達到最大值39.0 g/L。然而,當發(fā)酵溫度超過36℃后,產(chǎn)量逐漸下降。分析其原因,可能是溫度過高抑制了菌體的正常繁殖,導致L-酪氨酸代謝途徑受阻,進而引起產(chǎn)量下降和菌體密度降低。因此,36℃被確定為最優(yōu)發(fā)酵溫度[1]。
不同溫度下大腸桿菌的生長曲線
霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐采用先進溫控系統(tǒng),精準維持溫度穩(wěn)定,為菌體生長和產(chǎn)物合成提供最佳條件。在常規(guī)的玻璃發(fā)酵罐上,配備24V低壓安全電熱毯和換熱冷水管模塊,結合HF-Control控制軟件,實現(xiàn)加熱和冷卻過程的精確控制;不銹鋼發(fā)酵罐則通過夾套恒溫水加熱配合換熱冷水管控溫。
傳統(tǒng)發(fā)酵罐與HOLVES發(fā)酵罐參數(shù)對比
分階段溫度調(diào)控可顯著優(yōu)化菌體生長與產(chǎn)物合成。例如,在誘導階段,適當提高溫度可以增強目標蛋白的表達,而在穩(wěn)定期,降低溫度有助于減少副產(chǎn)物的積累。利用這個特性進行過程分階段溫度控制策略:在誘導初期(13.5~20h),誘導溫度采用40℃;21~37h降低溫度至38℃;38h以后采用36℃,最終工程菌合成L-Phe的產(chǎn)量達到 52.7g/L,顯著改善菌體生長和生產(chǎn)L-Phe的能力[2]。
霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐根據(jù)不同用戶的發(fā)酵工藝需求,支持靈活設置不同時間段的溫度參數(shù),實現(xiàn)全程自動化控制。具體操作界面如下圖一,除了溫度,還可以設置溶氧、pH、攪拌轉速和補料泵轉速,這不僅節(jié)省了大量的人力和時間成本,還顯著提高了發(fā)酵工藝的穩(wěn)定性和效率。
 
圖1 HF-Control 順控設置界面

三、溶氧和pH對大腸桿菌生長的影響

除了溫度控制,溶氧和pH值是影響大腸桿菌發(fā)酵的另外兩個關鍵因素。大腸桿菌的生長和代謝活動高度依賴氧氣供應,溶氧不足會導致菌體代謝受阻,進而影響產(chǎn)物合成。溶解氧的高低取決于通風量、攪拌轉速、發(fā)酵罐的徑高比、攪拌葉直徑大小,以及培養(yǎng)液濃度、培養(yǎng)溫度、罐壓等因素[3]。
霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐主要通過優(yōu)化罐體的徑高比,以及配置合適大小、類型的槳葉,同時HF-Control控制軟件將溶氧值與攪拌速率、通氣量關聯(lián),自動在范圍內(nèi)調(diào)節(jié),確保發(fā)酵液中的溶氧濃度維持在適宜水平。
同時,pH值的嚴格控制也是大腸桿菌發(fā)酵成功的關鍵。例如在探究不同pH值對大腸桿菌發(fā)酵異亮氨酸的影響時,發(fā)現(xiàn),前期控制發(fā)酵液pH保持7.2能夠縮短前期菌體延滯期,中期pH 7. 0可降低最大比生長速率,減少乙酸生成,后期 pH 6.7能夠有效降低NH4 +濃度,減緩菌體衰退,使菌體生物量及異亮氨酸產(chǎn)量得到有效提高。[4]
丁酸下大腸桿菌生長曲線圖
醋酸下大腸桿菌生長曲線圖
pH值過高或過低會直接影響菌體的生長和代謝產(chǎn)物的積累,霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐配備的自動化控制系統(tǒng)能夠?qū)崟r監(jiān)測pH值變化,并通過補酸或補堿操作維持發(fā)酵液的酸堿平衡。
通過精準控制溶氧和pH值,霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐不僅優(yōu)化了大腸桿菌的生長環(huán)境,還顯著提高了發(fā)酵效率和產(chǎn)物質(zhì)量。
 

四、發(fā)酵罐對大腸桿菌高密度培養(yǎng)的適配性與批次穩(wěn)定性(補料)

大腸桿菌具有易培養(yǎng)、遺傳學背景清楚、表達水平高、培養(yǎng)周期短等特點,成為目前應用最為廣泛的基因工程合成異源蛋白的原核表達系統(tǒng)。而工業(yè)生產(chǎn)發(fā)酵是以最低的成本獲得最高的細胞或其產(chǎn)物收益為基本目標,因此大規(guī)模高密度培養(yǎng)大腸桿菌的技術和工藝變得越來越重要。[5] 
研究表明,高密度發(fā)酵受多種因素影響,如表達系統(tǒng)、培養(yǎng)基組成、發(fā)酵條件控制、補料策略等。[6] 除了以上介紹的高精度參數(shù)控制,霍爾斯還開發(fā)了多種補料方式用于不同的發(fā)酵場景。最基礎是的恒速手動補料和周期性的按時補料,還有更適合高密度發(fā)酵的方程、指數(shù)補料,具體如下圖二。其補料速率是與菌體生長速率呈方程或指數(shù)關系,可以維持營養(yǎng)物質(zhì)濃度,并減少代謝副產(chǎn)物的積累。在重組大腸桿菌生產(chǎn)人生長激素的研究中,采用指數(shù)流加補料策略,菌體濃度達到120 OD525。[7]

圖2 HF-Control 補料泵設置界面
 
也可以根據(jù)發(fā)酵過程中的pH、溶氧實時參數(shù)進行動態(tài)調(diào)整補料速率,操作界面如下圖三,更精確地控制發(fā)酵過程,避免營養(yǎng)物質(zhì)過量或不足。例如發(fā)酵過程采用pH反饋控制補料策略,可以有效控制了乙酸的積累[8];采用溶氧反饋調(diào)節(jié)-限制性補料的方法,可以有效地降低有害物質(zhì)的積累保持了工程菌的穩(wěn)定性,提高目的蛋白的表達產(chǎn)量。[9] 多樣化的操作模式使得霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐具有高度適配性,顯著提高大腸桿菌發(fā)酵的效率和產(chǎn)物產(chǎn)量。
 
圖3 HF-Control 關聯(lián)界面
 
大腸桿菌發(fā)酵的批次穩(wěn)定性也是工業(yè)生產(chǎn)中的關鍵問題之一?;魻査笻OLVES發(fā)酵罐除了要優(yōu)化設計和精準控制參數(shù),還確保罐體上所有的的硬件參數(shù)經(jīng)過嚴格校準,減少設備間的差異。多聯(lián)發(fā)酵罐系統(tǒng)(如Twin220和Hub240)支持平行發(fā)酵,對并聯(lián)發(fā)酵罐的關鍵參數(shù)(如溫度、pH、溶氧、攪拌速度、通氣量等)進行同步控制和實時監(jiān)測,確保不同批次發(fā)酵過程的一致性和可重復性。
 
霍爾斯HOLVES發(fā)酵罐憑借其精準的溫度控制、高效的溶氧和pH調(diào)節(jié)能力,以及對大腸桿菌高密度培養(yǎng)的高度適配性,成功應對了大腸桿菌發(fā)酵過程中的嚴苛挑戰(zhàn)。其在工業(yè)生產(chǎn)中的應用,不僅提高了發(fā)酵效率和產(chǎn)物產(chǎn)量,還確保了批次穩(wěn)定性,為生物技術領域的大腸桿菌發(fā)酵提供了可靠的解決方案。
未來,隨著AI算法和物聯(lián)網(wǎng)(IoT)技術的深度融合,霍爾斯HOLVES將進一步優(yōu)化預測性調(diào)控和遠程監(jiān)控能力,為合成生物學和綠色制造提供更智能的發(fā)酵平臺。

參考文獻:
[1]杜麗紅,袁謹怡,戰(zhàn)俊杰,等.大腸桿菌產(chǎn)L-酪氨酸發(fā)酵工藝優(yōu)化[J].食品與發(fā)酵科技,2024,60(05):16-22.
[2]周海巖,劉龍,堵國成,等.誘導溫度對大腸桿菌BR-42 ΔpykA(pAP-B03)發(fā)酵生產(chǎn)L-苯丙氨酸的影響[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2014,40(04):7-12.DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.2014.04.014.
[3]培養(yǎng)基內(nèi)溶解氧的高低取決于哪些因素?[J].發(fā)酵科技通訊,2009,38(04):30.
[4]孫家凱,吳曉嬌,史建明,等.pH值對大腸桿菌發(fā)酵異亮氨酸的影響[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2012,38(03):12-16.DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.2012.03.012.
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[6]冀成法,劉忠,馬魯南,等.重組大腸桿菌高密度、高表達研究進展[J].生物技術,2022,32(02):246-251.DOI:10.16519/j.cnki.1004-311x.2022.02.0040.
[7]李民,陳常慶. 重組大腸桿菌高密度發(fā)酵研究進展[J].生物工程進展,2000,Vol.20,No.2
[8]蒙健宗,陳發(fā)忠,王青艷,等.重組海藻糖合成酶工程菌的pH-stat高密度發(fā)酵工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2006,(08):125-128.
[9]李毅,蒲勤,趙忠良,等.溶氧反饋-分批補料高密度培養(yǎng)人骨形成蛋白-2工程菌[J].生物工程學報,2002,(06):718-723.DOI:10.13345/j.cjb.2002.06.016.
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